7 de enero de 2016

Recuperación espermática en hombres con azoospermia

INTRODUCCIÓN


La azoospermia es definida como la ausencia de espermatozoides en el fluido seminal, que puede ser debida a una inadecuada estimulación hormonal (hipogonadismo hipogonadotrópico), anormalidades espermáticas u obstrucción. Aproximadamente el 10-15% de la infertilidad por factor masculino se ha atribuido a azoospermia.

Una vez obtenido el diagnóstico de azoospermia mediante la realización de entre 2 y 3 seminogramas, su evaluación debe dirigirse a determinar si es causada por una pérdida de espermatogénesis o por una obstrucción ductal. Las causas incluyen: obstrucción de los vasos deferentes, tamaño testicular, FSH sérica (Figura 1).





Figura 1. Algoritmo para la evaluación del paciente con azoospermia, (tomada de Urbina. Lerner Biber. Fertilidad y reproducción asistida. Primera edición. Caracas: Editorial Médica Panamericana; 2008).


Causas de azoospermia obstructiva: orquidopexia, cirugía inguinal, escrotal o retroperitoneal, vasectomía, enfermedades de transmisión sexual, tuberculosis y procesos infecciosos, entre otras. También es interesante investigar en la familia si hay antecedentes de fibrosis quística, factor muy importante en la obstrucción.

La azoospermia no obstructiva es el resultado de la producción de esperma gravemente deteriorado o inexistente: hipogonadismo hipogonadotrópico, anormalidades espermáticas.


Objetivos de la recuperación espermática:

  • Obtener la mejor calidad de espermatozoides posible.
  • Recuperar un adecuado número de espermatozoides tanto para uso inmediato como para criopreservación.
  • Minimizar el daño al tracto reproductivo de modo que no amenace futuros intentos de recuperación espermática o reconstrucción quirúrgica.

Requerimientos:

El personal del laboratorio de reproducción asistida debe tener experiencia en ICSI y debe estar presente en el lugar de la recuperación espermática.

Para realizar métodos de recuperación espermática abierta se debe contar con instrumental microquirúrgico; mientras que para la recuperación espermática percutánea, debe contarse con dispositivos de presión negativa que puedan acoplarse a agujas finas, así como también disponer de instrumental (pistolas) de biopsia percutánea

Se debe tener disponible un medio de incubación o cultivo con nutrientes espermáticos como HAM’S F-10.

Por normas internacionales para la criopreservación espermática se solicitarán previamente exámenes para descartar Hepatitis B, Hepatitis C, VIH, HTLV 1 y 2, Sífilis, CMV (Citomegalovirus), Neisseria gonorrhoeae y Chlamydia trachomatis.

Debe tenerse un microscopio de laboratorio en el sitio donde se realice la recuperación espermática para determinar el número y la movilidad de los espermatozoides del esperma obtenido. De igual modo, las técnicas de recuperación espermática abierta requieren de la disponibilidad de un microscopio quirúrgico.

Métodos:

Tradicionalmente se realizaba por biopsia testicular. Este método convencional de extracción de esperma por vía quirúrgica general, biopsia convencional, ofrece la mejor oportunidad de recuperar espermatozoides, independientemente de la etiología de la azoospermia. La biopsia abierta también permite la escisión de una masa de tejido más grande, permitiendo el acceso a un mayor número de espermatozoides disponibles para la congelación. El principal inconveniente de la biopsia abierta, desde el punto de vista del paciente, es el tamaño de la herida y el tiempo de curación en comparación con otras formas de aspiración, a saber, la aspiración con aguja. Por eso, ahora, se suelen utilizar más otros métodos:


  • MESA: Aspiración Espermática Epididimaria Micro-quirúrgica.
  • PESA: Aspiración Espermática Epididimaria Percutánea.
  • TESE: Extracción Espermática Testicular (sería la biopsia abierta).
  • TESA: Aspiración Espermática Testicular (percutánea).
  • TEFNA: Aspiración Testicular Epididimaria con Aguja Fina (también percutánea).


MESA

(Urbina. Lerner Biber. Fertilidad y reproducción asistida. Primera edición. Caracas: Editorial Médica Panamericana; 2008). Esta técnica implica la exposición de los túbulos epididimarios, la apertura microquirúrgica del túbulo y la aspiración del fluido tubular dentro de una jeringa de 1 cm3 que contiene medio de incubación espermática.

Para esta aspiración puede usarse un catéter (angiocatéter) de pequeña talla (22-27 gauge) unido a una jeringa para desarrollar la aspiración. Es útil deprimir el área abierta del túbulo epididimario para crear una apertura a partir de la cual el fluido epididimario pueda ser aspirado. Es necesario administrar al sujeto anestesia general. Si hay espermatozoides móviles que se encuentren en el primer sitio, la maniobra se repite, hasta recuperar repetidas muestras. Típicamente, se recuperan sólo unos pocos microlitros de fluido porque las muestras de espermatozoides del epidídimo están altamente concentradas en el fluido del epidídimo (aproximadamente 1 × 10 6 espermatozoides / mL).

Los espermatozoides epididimarios obtenidos por este método sólo son útiles para ICSI.

Los biólogos o demás personal cualificado, pueden congelar los espermatozoides en varios tubos o pajuelas, para poder ser utilizados en varios intentos de ICSI, y así disminuir la necesidad de realizar otra MESA, ya que se suelen obtener una gran cantidad de espermatozoides.

Es la técnica de elección para algunos cirujanos para recuperar quirúrgicamente espermatozoides debido a la alta concentración y la calidad de los espermatozoides obtenidos en comparación con la obtención de espermatozoides testiculares, especialmente en pacientes con obstrucción del epidídimo irreparable. Los espermatozoides del epidídimo son maduros y progresivamente móviles, y aspirados del epidídimo son mucho más limpios y desprovistos de los restos celulares que se ven en las preparaciones de espermatozoides testiculares. La motilidad de los espermatozoides del epidídimo hace que la selección de espermatozoides durante la ICSI sea más fácil sin la introducción de medidas adicionales (como el tratamiento con agentes que mejoran la motilidad), a diferencia de que estas medidas adicionales pueden ser necesarias para identificar gametos viables si se utilizan espermatozoides testiculares. En un estudio comparativo de las dos técnicas de recuperación de espermatozoides del epidídimo (PESA y MESA), la tasa de recuperación de espermatozoides por PESA resultó ser del 61%, mientras que por MESA resultó ser del 93%, por lo que se concluyó con que con la técnica MESA el éxito era mayor.

Aunque, por otros estudios, se ve que es posible que al realizar MESA puedan encontrarse espermatozoides con una movilidad disminuida o ausente, por lo que puede ser necesaria la obtención de fluido tubular epididimario de niveles más altos, o incluso, de conductos deferentes para así obtener espermatozoides móviles del epidídimo obstruido. La disección es, entonces, realizada en el extremo caudal del epidídimo y llevada, proximalmente, hasta que se localicen espermatozoides móviles. Los biólogos deben informar al cirujano cuando haya sido obtenido un número suficiente de espermatozoides.

Si hay disparidad en el tamaño de los testículos, el procedimiento se desarrolla en el testículo más grande; aunque, en ocasiones, es necesario realizarlo bilateralmente y así obtener espermatozoides para criopreservación en suficientes alícuotas para futura ICSI (idealmente cada alícuota debe contener de 250.000 a 500.000 espermatozoides móviles).

Al finalizar el procedimiento, algunos cirujanos cierran cada incisión en el túbulo epididimario; mientras que otros, simplemente, cauterizan cada incisión para sellar la abertura.


PESA

(Urbina. Lerner Biber. Fertilidad y reproducción asistida. Primera edición. Caracas: Editorial Médica Panamericana; 2008). Esta técnica se lleva a cabo mediante una aguja tipo mariposa de 21 a 22 gauge, la cual puede unirse a una jeringa de tuberculina de 1 cm3 o acoplarse a una de mayor capacidad (25 cm3) montada en un dispositivo que permite crear presión negativa de manera sostenida.

A diferencia de MESA, donde el cirujano es capaz de visualizar los túbulos expuestos del epidídimo, PESA es un procedimiento ciego. De nuevo, si hay espermatozoides móviles presentes en el primer sitio, el cirujano extraerá repetidamente muestras.

La aguja es insertada en el epidídimo y se aspira hasta ver la aparición de una columna o gotas de fluido epididimario, entonces se sujeta el tubo con el fluido extraído y la jeringa antes de remover la aguja. Este procedimiento con técnicas de reproducción asistida obtiene tasas de embarazo equivalentes a aquéllas obtenidas usando recuperación espermática de manera micro-quirúrgica o por eyaculación. Es importante tener presente que puede producirse un daño irreversible del epidídimo, lo que impediría una futura reconstrucción si ésta fuese deseada. En esta técnica se emplea anestesia local.

PESA puede ser una buena opción para los pacientes con obstrucción ductal distal al epidídimo.


TESA

(Urbina. Lerner Biber. Fertilidad y reproducción asistida. Primera edición. Caracas: Editorial Médica Panamericana; 2008). Para los pacientes con azoospermia obstructiva en los que los espermatozoides no se pueden encontrar en el epidídimo, siempre es posible encontrar espermatozoides en el testículo.

Puede ser llevada a cabo con los materiales de la PESA. También se utiliza anestesia local. Una vez introducida la aguja en el testículo y creada la presión negativa, se mueve la aguja hacia dentro y hacia fuera, sin ser extraída y en la misma dirección, múltiples veces. Antes de remover la aguja, la presión negativa es eliminada lentamente para prevenir el aspirado de túbulos. Después de ser retirada, se separa de la jeringa, se aspira aire en ésta (de 5 a 10 cm3) y se conecta nuevamente, usando el aire para pasar el contenido de la aguja dentro del medio de incubación espermática.

Un método alternativo a este es llevar a cabo la TESA mediante una aguja de 18 o 20 gauge de biopsia, montada en una pistola para tal fin, de las cuales existen varias en el mercado. Una vez finalizado el procedimiento, debe realizarse presión sobre el sitio de punción durante 1 ó 2 minutos para garantizar la hemostasia.

Belker y Schrepferman han encontrado espermatozoides testiculares viables en un 75% de pacientes con azoospermia obstructiva tratados con TESA, por eso sus tasas de embarazo resultaron relativamente altas. En sus primeros 103 casos de TESA con ICSI lograron una tasa de embarazos clínicos del 30% y una de embarazos a término del 25%. Más recientemente, muchos centros de fertilidad han reportado tasas de embarazos clínicos del 40% al 55%, equivalentes a las logradas con esperma eyaculado normalmente.


TESE

(Urbina. Lerner Biber. Fertilidad y reproducción asistida. Primera edición. Caracas: Editorial Médica Panamericana; 2008). Es una opción disponible para hombres con azoospermia no obstructiva que desean tener un hijo genético, consiste en la recuperación espermática del tejido testicular por alguna forma de biopsia mediante cirugía abierta. Esta técnica requiere anestesia general.

Puede realizarse por medio de microdisección o mediante la obtención de tejido testicular; al practicar una escisión de éste con unas tijeras, una vez realizada la apertura de la albugínea testicular. Con la microdisección, una mínima cantidad de tejido testicular es escindido y puede ser recuperada una cantidad suficiente de espermatozoides. Mediante la obtención de tejido testicular, al realizarse una magnificación óptica pueden identificarse las zonas avasculares del testículo para ocasionar el menor daño posible.

En general, el número de espermatozoides obtenidos por biopsia abierta (TESE) es significativamente mayor que el obtenido por aspiración con aguja.

La biopsia pretratamiento ha dejado de ser desarrollada en muchos centros, para llevarse a cabo en el momento de la recuperación espermática, ya sea previo a un ciclo de FIV con criopreservación o dentro de un ciclo al tiempo de la obtención de ovocitos. Los hallazgos de la biopsia diagnóstica son útiles para evaluar la probabilidad de TESE exitosa, pero no son garantía de que serán encontrados espermatozoides el día de FIV. Se ha reportado que de un 20% a un 35% de los hombres con azoospermia no obstructiva tienen espermatozoides en eyaculados previos a TESE.

El patrón espermático más avanzado (no el predominante) hallado en la biopsia testicular parece estar relacionado con los resultados de recuperación espermática. Así, se tiene  que se pueden encontrar espermatozoides hasta en un 81% de los casos de hipoespermatogénesis; en un 42% de aquéllos con arresto de la maduración y en un 24% de los pacientes con patrón histológico de sólo células de Sertoli.

Schlegel y colaboradores, reportaron recuperación espermática en pacientes con azoospermia no obstructiva: en el 95% de los pacientes con hipoespermatogénesis (documentada por previa biopsia testicular), en el 90% de los que tienen arresto de maduración, en el 30% de los que tienen sólo células de Sertoli, en el 75% de los hombres con azoospermia obstructiva debido a criptorquidia, que se someten a TESE, y en el 70% de los hombres con Síndrome de Klinefelter que se someten a Micro-TESE.

Schlegel encuentra que la microdisección mejora las tasas de recuperación del 45% (10/22) al 63% (17/27) en una serie secuencial de intentos de TESE. La muestra por microdisección produjo 160.000 espermatozoides  en 9,4 g de tejido; mientras que solamente 64.000 espermatozoides fueron encontrados en muestras obtenidas por biopsias convencionales, con un promedio de 720 mg  de tejido escindido.

La TESE no está exenta de complicaciones y así Schlegel y Sue, reportaron daño en el flujo sanguíneo testicular por desvascularización después de múltiples biopsias. Por lo que proponen, entonces, el método microquirúrgico de TESE (Micro-TESE), con el que se obtiene un número abundante de espermatozoides a partir de una mínima cantidad de tejido testicular en hombres con azoospermia no obstructiva.

En este procedimiento, los túbulos seminíferos dilatados entre túbulos seminíferos colapsados son los que probablemente contienen espermatozoides. Aunque con Micro-TESE la recuperación de espermatozoides en azoospermia no obstructiva es menor que con múltiples biopsias, la microdisección produce una mayor concentración de espermatozoides, con menos tejido removido.

Las ventajas de la micro-TESE, además de las tasas de recuperación de espermatozoides superiores, incluyen la prevención de complicaciones como hematomas, fibrosis, y la producción de andrógenos alterada. 

Un método alternativo descrito por Turek y colaboradores es el mapeo del testículo por múltiples aspiraciones con aguja fina, que permite determinar los mejores sitios para, más tarde, desarrollar TESE o TESA; así el paciente confortablemente tiene acceso a FIV o ICSI sin la incertidumbre y sin el uso de tejido testicular criopreservado, lo cual puede afectar a la tasa de embarazo.

Los túbulos seminíferos logrados por TESE o TESA pueden ser sometidos a disección mecánica para la obtención de espermatozoides y colocarlos en el medio de incubación de espermatozoides. En muchos centros de fertilidad, primero se diseca el tejido de los túbulos entre 2 pequeñas agujas (26 ó 27 gauge), y si no se observan espermatozoides se procede a hacer una remoción enzimática del tejido. Si sólo se obtuvieron espermatozoides no móviles, éstos se pueden incubar con pentoxifilina o puede ser necesario hacer un test de shock hipoosmótico para seleccionar los espermatozoides viables que serán inyectados en cada ovocito.


TEFNA

(Urbina. Lerner Biber. Fertilidad y reproducción asistida. Primera edición. Caracas: Editorial Médica Panamericana; 2008). Este otro procedimiento puede utilizarse tanto en la azoospermia obstructiva como en la azoospermia no obstructiva, en el cual se combina tanto la aspiración epididimaria como testicular con aguja fina; para ello, se utiliza una aguja tipo mariposa número 23 conectada a una jeringa de 20 cm3, acoplada a un sistema de succión manual como el anteriormente descrito. La aguja es introducida dentro de la cabeza del epidídimo y se aplica succión. Cuando el fluido epidimario deja de acumularse en el tubo, la aguja es retirada y el aspirado vertido en el medio de incubación de espermatozoides. Se utiliza anestesia local para aliviar las molestias que se ocasionarían en el procedimiento al sujeto.

Esta técnica parece ser eficiente, fácil de aprender, permite al operador la posibilidad de llegar a varios sitios intratesticulares, segura y bien tolerada por todos los pacientes, y podría llegar a considerarse la primera opción siempre que la recuperación de espermatozoides se intente en pacientes con azoospermia no obstructiva, según el estudio de Aby Lewin y colaboradores. Además, aumenta la posibilidad de recuperación de espermatozoides para ICSI, casi sin reducción en el volumen testicular.

Según el estudio de Bhushan y colaboradores, múltiples aspiraciones con aguja fina testiculares se han intentado en los hombres con azoospermia no obstructiva con éxito variable. El éxito de la recuperación de espermatozoides por TEFNA, según este estudio, depende de la etiología y la gravedad de la causa subyacente de la azoospermia. En un estudio prospectivo que compara la eficacia de múltiples biopsias con aguja con la extirpación testicular abierta, los espermatozoides se recuperaron en sólo el 14% de los pacientes con azoospermia no obstructiva de múltiples aspiraciones de aguja, y en el 63% de los pacientes después de la biopsia con escisión abierta. De este estudio se obtiene que el orden de encontrar espermatozoides de mayor a menor probabilidad en azoospermia no obstructiva es: Micro-TESE, TESE, TEFNA, TESA.


CONCLUSIONES

Las ventajas de las técnicas de recuperación espermática percutáneas (PESA, TESA, TEFNA) es que pueden ser desarrolladas con anestesia local, lo que minimiza morbilidad, y al mismo tiempo, costes. La ventaja de MESA es que la cantidad de espermatozoides que puede ser obtenida es mayor, esto permite la criopreservación de alícuotas extras para posibles futuros ciclos de ICSI.

La TESA puede ser utilizada para obtener espermatozoides testiculares en hombres con azoospermia obstructiva; mientras que la TESE puede ser necesaria para obtener espermatozoides testiculares en hombres con azoospermia no obstructiva, debido a que éstos tienen pocos espermatozoides.

Las posibilidades de recuperación de espermatozoides, y de lograr un nacimiento vivo por ICSI, se incrementan en parejas cuyo sujeto masculino presenta azoospermia obstructiva, en lugar de azoospermia no obstructiva.

Para la obtención de espermatozoides testiculares en hombres con azooospermia no obstructiva, se requiere que el personal del laboratorio de fertilidad sea adecuado y dedicado, ya que el tejido testicular tiene méritos para ser examinado en mayor proyección del tiempo, incluso horas y días después de su extracción en una incubación adecuada, en busca de espermatozoides.

El cirujano debe informar a las parejas de las ventajas y desventajas de cada una de las técnicas de recuperación espermática, así como de la posibilidad de criopreservación en un ciclo previo o en el día de la obtención de los ovocitos. Por último, debe tener la disponibilidad de un lugar de recuperación espermática en un laboratorio apropiado: con materiales, equipos y biólogos, u otro personal cualificado, altamente capacitados, además de estar familiarizado con las preferencias de éstos con respecto al uso de espermatozoides epididimarios o  testiculares, criopreservados o frescos.


Bibliografía:

1. Urbina. Lerner Biber. Fertilidad y reproducción asistida. Primera edición. Caracas: Editorial Médica Panamericana; 2008.

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3. Bhushan K.Grangade. Cryopreservation of testicular and epididymal sperm: techniques and clinical outcomes of assisted conception. Clinics (Sao Paulo). 2013 Feb; 68(Suppl 1): 131–140. Doi: 10.6061/clinics/2013(Sup01)15.

4. Sandro C. Esteves Ricardo Miyaoka. Ashok. Sperm retrieval techniques for assisted reproduction. ANDROFERT, Andrology and Human Reproduction Clinic (SCE, RM), Campinas, São Paulo, Brazil and Center for Reproductive Medicine, Glickman Urological and Kidney Institute (AA), Cleveland Clinic, Cleveland, Ohio, USA. Vol. 37 (5): 570-583, September - October, 2011.

5. Aby Lewin. Benjamin Reubinoff. Anat Porat-Katz. David Weiss. Vered Eisenberg. Revital Arbel. Hagar Barel. Anat Safran. Testicular fine needle aspiration: the alternative method for sperm retrieval in non-obstructive azoospermia. Hum. Reprod. (1999) 14 (7):1785-1790. Doi: 10.1093/humrep/14.7.1785.

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7. Ron.El R. Strassburguer D. Fredler S. Komarovski D. Bern O. Soffer Y. Raziel A. Extendend Sperm preparation: an alternative to testicular sperm extraction in non-obstructive azoospermia. Hum. Reprod. 1997; 12:1 222-6.

8. Schlegel PN. Palermo GD. Goldstein M. Menéndez S. Zaninovic N. Veeck LL. Rosenwaks Z. Testicular sperm extraction with ICSI for non-obstructive azoospermia. Urology 1997; 49: 435-40.

9. Schlegel PN. Testicular sperm extraction: microdissection improves sperm yield with minimal tissue excision. Hum. Reprod. 1999; 14: 131-5.

10. Schlegel PN. Sue LM. Physiological consecuences of testicular sperm extraction. Hum. Reprod. 1997; 12:1 688-92.

11. Ture PJ. Ljung BM. Cha I. Conaghan J. Diagnostic findings from testis fine needle aspiration mapping in obstructed and non-obstructed azoospermic men. J Urol 2000; 163:1 709-16.

12. Shrivastav P. NadKarni P. Wensroort S. Craft I. Percutaneous azoospermia. Hum. Reprod. 1994; 11:2  058-61.

13. Craft I. Tsirigotis M. Simplified recovery, preparation and cryopreservation of testicular spermatozoa. Human. Reprod. 1995; 10:1 623-7.

14. Craft I. Tsirigotis M. Bennet V. Mohamed T. Yasser K. Hogewind G. et al. Percutaneous epididymal sperm aspiration and intracitoplasmatic sperm injection in the management of infertility due to obstructive azoospermia. Fertil Steril. 1995; 63:1 038-42.

15. Safran A. Reubinoff BE. Porat-Katz A. Schenker IG. Lewin A. Assisted reproduction for the treatment of azoospermia. Hum. Reprod. 1998; 13 (Supl 4): 47-60.




Autora:

         María Jesús Nieto García.


Análisis Funcional del Espermatozoide.

Máster Universitario en Biología y Tecnología de la Reproducción 2015-2016, Universidad de Oviedo.






Espermatozoides a dieta.


La mayoría de los beneficios de una dieta saludable son ampliamente conocidos, ya que disminuyen problemas de salud, ayudan a alargar tu vida y te hace sentir mejor si se compagina con ejercicio. Pero, si estos no son lo suficientemente buenos para ti, te damos otra alegría, mejorar tus hábitos alimenticios también te puede convertir en todo un semental. Existen muchos estudios que aseguran que una dieta rica y equilibrada en antioxidantes y ácidos grasos poliinsaturados, entre otros, pueden mejorar tu calidad seminal.   
La calidad seminal está definida por varios parámetros como son el volumen del semen, recuento total de espermatozoides, velocidad y forma de los espermatozoides (8). Si estos parámetros seminales son los adecuados, la calidad seminal será buena y por tanto beneficiará a aquellos hombres que deseen ser padres (en la figura 1 puedes observar los parámetros que se estudian para saber si el semen es de calidad o no).
De hecho, se sabe que actualmente el descenso de la fertilidad humana es debido en parte, a una dieta deficiente en dichos componentes (9).

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Figura 1. Parámetros de calidad seminal.
Pero… ¿qué son y qué hacen los antioxidantes?

Los antioxidantes son moléculas de diverso origen cuya función es evitar la oxidación excesiva de las moléculas presentes dentro y fuera del espermatozoide, evitando así el daño en su material genético (DNA), en sus proteínas o en sus membranas. Entre ellos, podemos encontrar a las vitaminas A, B9, B12, C, D3, E, glutatión o ácido alfa-lipóico, entre otros. Todos estos elementos podemos incluirlos de manera sencilla en nuestra dieta, a través de varios grupos de alimentos como:

  • Las frutas: Son un grupo de alimentos ya muy conocido y atractivo por su gran variedad de colores y sabores. Este grupo de alimentos contiene variadas concentraciones de diferentes pigmentos con capacidad antioxidante (6). La toma de los distintos tipos de antioxidantes en la dieta, como licopenos o carotenoides, entre otros, están relacionados con la calidad espermática. De todas formas todavía no se conoce en detalle la relación de la dosis de estos antioxidantes con la calidad espermática (12).
  • Las verduras: El folato o vitamina B9 se incluye en alimentos como la lechuga, las espinacas y los espárragos (11). Esta vitamina tiene papeles muy importantes como antioxidante, pero si fuera poco, también va a aumentar la velocidad con la que naden los espermatozoides además de aumentar en número (7). A si que chicos, aunque ya sabemos que la comida de “color verde” no es la más apetecible, habrá que hacer un esfuerzo de vez en cuando.
  • Los cereales: Si siempre te han dicho que desayunar es importante, después de leer este artículo se va a convertir en un hábito obligatorio de tu rutina, ya que muchos estudios aseguran que los cereales son ricos en vitamina A, folatos y minerales tales como el selenio y el zinc (10). Pero no os confundáis, no cualquier desayuno sirve. Por un lado, se ha visto que los cereales integrales o la fruta son muy favorables (5), pero por otro lado, los cereales refinados no son para nada aconsejables pues su ingesta se ve correlacionada con una disminución de la motilidad espermática (4).
  • Los alimentos de origen animal: Al ser un conjunto tan amplio de alimentos aportan multitud de beneficios. Este grupo de alimentos, que no solo engloban las carnes y huevos sino que también, tenéis que recordar, al pescado y a los productos lácteos.
¿Y por qué son tan importantes los alimentos de origen animal?

Veréis, la única forma de poder consumir vitamina B12 es a partir de alimentos de origen animal como son las sardinas, las vísceras y el atún, entre otros (11), ¿os acordáis de las propiedades del folato?, pues bien, esta vitamina tiene las mismas bondades sobre el semen.
Por otra parte, alimentos como la yema de huevo o la leche son ricos en vitamina A que, como la mayoría de vitaminas que estamos citando en este artículo, tiene un efecto positivo sobre la movilidad y la concentración seminal (7, 11). Otros alimentos como las grasas y los aceites de origen animal son ricos en vitamina E, nutriente con altos efectos antioxidantes y que entre todos los antioxidantes no enzimáticos citados, es el que más especializado se encuentra en evitar daños en la membrana espermática (2).
En cuanto a las carnes procesadas, deberéis tener cuidado con ellas, ya que su ingesta se ha visto directamente relacionada con una peor morfología espermática (1). 
Por otra parte, queremos reiterar que hay que tener cuidado con su ingesta excesiva, ya que últimamente están muy de moda los suplementos vitamínicos y no siempre son ni necesarios ni buenos.
Por último, una aclaración más, el papel de estos antioxidantes, tan solo es de ayuda para mejorar la fertilidad, pero en ningún caso erradicarán problemas de infertilidad, ya que normalmente son debidos a otras causas que su médico deberá de estudiar.

¿Qué son y dónde se encuentran los ácidos grasos poliinsaturados?

Los ácidos grasos poliinsaturados, en abreviación PUFAs, son moléculas lipídicas que poseen más de un doble enlace entre sus carbonos. Los ácidos grasos  esenciales para el ser humano son el omega 3 y 6. Estos ácidos grasos no pueden ser sintetizarlos y deben ser ingeridos mediante la dieta. Los podemos encontrar principalmente en el pescado, las semillas y los frutos secos (11).
El pescado, y sobre todo el pescado azul, contiene altos niveles de omega 3, vitamina D y ácido docosahexaenoico (DHA), uno de los principales componentes de la membrana espermática (3, 10).
Algunos de los pescados con mayor cantidad de omega 3 en la dieta mediterránea, aparecen en la tabla 1 (3).
Tabla 1: Valores de contenido en omega 3 de varios pescados (1).
Sin embargo, para aquellos hombres a los que el pescado no les haga mucha ilusión, que no se preocupen, existen otros alimentos con elevado contenido de este ácido graso, como por ejemplo el marisco, la yema de huevo, los frutos secos o el brócoli.

¿Falta algo más en mi dieta?

Por supuesto, algunos nutrientes y minerales, como el zinc o el selenio, también están relacionados con una buena calidad espermática. Estos elementos los puedes encontrar en la mayoría de alimentos que ya se han mencionado, y sobre todo en los cereales, como el trigo y el arroz, que son ricos en selenio (11). Este mineral es esencial en la formación de los espermatozoides (espermatogénesis) y en la síntesis de testosterona (7), hormona necesaria para fabricar espermatozoides. Por su parte el zinc, que aparece en carnes y pescados (11), está implicado en casi todos los aspectos de la reproducción masculina (7).

Entonces, ¿qué tengo que hacer para tener una buena calidad seminal?

Después de presentarte a todos los alimentos que contienen propiedades beneficiosas, podemos decirte que una dieta que incluya antioxidantes y ácidos grasos omega 3 en la cantidad adecuada para tu condición, permitirá mejorar tu salud y, por tanto, la calidad seminal. Como todo médico recomienda hoy en día, una buena dieta equilibrada (a ser posible, sin excesos ni defectos en cualquiera de los nutrientes) y una buena dosis de ejercicio te permitirá mantener una vida sana, pero no solo a ti, sino también a tus espermatozoides.

Laura Gamoneda Bello
Sergio González Fernández
Sara Sanz Juste




Bibliografía:
  1. Afeiche MC., Gaskins AJ., Williams PL., et al. 2014. Processed Meat Intake Is Unfavorably and Fish Intake Favorably Associated with Semen Quality Indicators among Men Attending a Fertility Clinic. The Journal of Nutrition. 144(7):1091-1098.
  2. Agarwal A., Durairajanayagam D. and du Plessis S. 2014. Utility of antioxidants during assisted reproductive techniques: an evidence based review. Reproductive Biology and Endocrinology, 12:112, 1-19.
  3. Albinali H., 2010. OMEGA-3 IN ARABIAN GULF FISH. Heart Views : The Official Journal of the Gulf Heart Association, 11(1):21–23.
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  5. Gaskins AJ., Colaci DS., Mendiola J., et al. 2012. Dietary patterns and semen quality in young men. Hum Reprod. 27(10):2899-907.
  6. Gil MI., Tomás-Barberán F., Hess-Pierce B., et al. 2002. Antioxidant capacities, phenolic compounds, carotenoids, and vitamin C contents of nectarine, peach, and plum cultivars from California. J Agric Food Chem.; 50(17):4976–82.
  7. Hechtman L. and Billica R. “Male infertility”. Advancing Medicine with Food and Nutrients. Ingrid Kohlstadt. 2013. 2º Edición. cap.40: p.763-776.
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  9. Mendiola J., Torres-Cantero AM., Vioque J., et al. 2010. A low intake of antioxidant nutrients is associated with poor semen quality in patients attending fertility clinics. Fertility and Sterility Vol. 93, No. 4.
  10. Soltan SS. and Gibson RA. 2008. Levels of Omega 3 fatty acids in Australian seafood. Asia Pac J Clin Nutr; 17(3):385-390.
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SEXO A LA CARTA


        La selección del sexo de la descendencia antes de la concepción, ha sido y es, un gran reto tanto para científicos como para ganaderos. La producción de animales según el sexo tiene beneficios económicos obvios en la producción de animales de abasto, ejemplo de ello es la preferencia de hembras en el sector bovino de producción de leche. Sin embargo, en animales de compañía como es el caso del caballo, la elección entre un sexo u otro es algo mucho más subjetivo y depende de las preferencias del propietario, aunque se sabe que algunas líneas producen mejores descendientes hembras, mientras que otras producen mejores machos. Además, dada la situación económica actual, la obtención de descendientes del sexo deseado disminuiría la producción innecesaria de muchos productos con el fin del conseguir el animal anhelado.

En 1998, nació la primera potra concebida mediante la técnica de selección de sexo; "Call Me Madam", que es como la llamaron, fue producida por XY Inc., de Fort Collins, en Colorado (empresa que actualmente es portadora de la patente), aunque el servicio no estuvo disponible comercialmente para criadores hasta el año 2010.

   


La elección del sexo de las crías al nacer, es un requerimiento cada vez más frecuente por parte de los criadores de caballos. Ejemplo de ello lo tenemos en algunas disciplinas deportivas como la doma clásica, dónde se prefieren animales del sexo masculino, mientras que en el polo, donde la raza más utilizada es la de Polo Argentino, existe un gran interés deportivo y, sobre todo, comercial de la hembra sobre el macho, al considerarse las hembras más audaces y valientes.  En las disciplinas de “raid” y “cross country” se suelen preferir machos, ya que éstos tienen menos predisposición para sufrir ciertas enfermedades de esfuerzo como las miositis.

Sin embargo, aunque nos podría parecer la panacea, no todo es tan sencillo.  El trabajo con semen sexado de caballo es muy caro y se requieren tecnologías y personal muy especializado, además de existir numerosas dificultades para obtener los resultados deseados.

Actualmente, el único método repetible y fiable de selección de espermatozoides en función del sexo está basado en la tecnología de separación de Beltsville, que utiliza la citometría de flujo adaptada para espermatozoides, y que permite realizar esa separación mediante la detección de las distintas fluorescencias que emiten los dos tipos de espermatozoides.

    
 Citómetro de flujo adaptado para el sorter de células de la Universidad de Oviedo

          El sexo de la descendencia se determina de forma natural en el momento de la fecundación, en función del tipo de espermatozoide que fecunda al óvulo. Los espermatozoides que portan el cromosoma X van a dar lugar a hembras, mientras que los que portan el Y van a dar lugar a machos.

        Se ha comprobado que el cromosoma X contiene más ADN que el Y (por lo tanto es más denso y tiene algo más de masa), aunque esta diferencia va a variar entre especies, y es uno de los factores que van a determinar lo fácil que será sexar una muestra de semen. En concreto en la especie equina, el X tiene un 3,7% más de ADN que el Y.
  
    

 Imagen obtenida de http://www.desmotivaciones.es


      Es en base a esta diferencia en el contenido de ADN de ambos cromosomas sexuales, detectada en el sorter por fluorescencia, en las que se basan las tecnologías de sexado espermático.




Además de la proporción de ADN, existen otras muchas variables que van a definir la capacidad de un eyaculado para ser dividido, y es lo que se denomina “índice de divisibilidad”. Está definido fundamentalmente por la diferencia en el contenido de ADN y por la forma y el tamaño de la cabeza del espermatozoide, y que varían entre las distintas especies de mamíferos. Mientras más grande, aplanada y ovalada sea la cabeza, más fácilmente podrá ser orientada en el citómetro, y además, se ha establecido que una muestra seminal va a ser “separable” cuando la diferencia de contenido de ADN de los dos tipos de espermatozoides sea como mínimo del 3,5%. 

        De los mamíferos estudiados, el hombre y el equino son los más difíciles de separar, ya que el área de la cabeza de ambos es bastante pequeña y las diferencias en el contenido de ADN no son muy grandes (3,7% en el caballo y 2,8% en el humano), lo que definen índices de divisibilidad bajos.

Hay que tener en cuenta que los únicos diluyentes que van a mantener la fertilidad del eyaculado del caballo son aquellos constituidos a base de leche desnatada, lo cual proporciona una opacidad a la muestra, que interfiere con el proceso de separación, cosa que no ocurre en otras especies.

Debido a los inconvenientes anteriores, al final del proceso vamos a obtener unas cantidades de espermatozoides del sexo deseado muy pequeñas, y en la especie equina necesitamos una gran cantidad de espermatozoides para conseguir una preñez. Para solventar este problema, se desarrolló una técnica de inseminación con bajas dosis de espermatozoides, en la que, mediante un endoscopio, se deposita la dosis inseminante justo al final del útero. De esta manera se evita el paso de los espermatozoides por el útero entero, donde se perdería una gran parte de ellos.

Con el desarrollo de la técnica anterior se solventa la cuestión de la baja dosis obtenida, sin embargo, uno de los grandes problemas que presenta el semen sexado de caballos es la obtención de resultados muy bajos cuando se ha intentado congelar. Esto es un gran inconveniente, ya que en la mayoría de los casos, el laboratorio, con el equipo altamente especializado, no va a estar cerca del caballo cuyo semen queremos sexar o de la yegua que queremos inseminar.

Como puede observarse, existen aún multitud de  limitaciones para que el sexado de semen pueda establecerse de forma comercial en la industria equina.

Argentina es uno de los países en los que dicha industria constituye una importante fuente de ingresos y en el que la obtención de un determinado sexo u otro supone una inversión importante, al considerar el polo como deporte nacional y mover cantidades importantes de dinero. En este país se hace todo lo posible para obtener hembras, ya que son las que se van a utilizar en esta disciplina deportiva, y están dispuestos a pagar por ello cualquier precio. Esto lo utilizan las distintas empresas licenciatarias de la patente de sexado seminal, llegando a desarrollar distintas estrategias comerciales como son la de albergar al semental y a la yegua destinataria en instalaciones preparadas al respecto, o incluso llegando a desplazar la máquina de sexado en trailers hasta las explotaciones que contraten sus servicios.
            

Remolque-laboratorio con el aparataje necesario para sexar el semen y facilitar el proceso

Bibliografía


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Páginas webs consultadas


“Artículo Sobre Semen Sexado En Revista Polo Live.” Acceso 3 de Enero de 2016. http://www.reproduccionequina.com.ar/pololive.php.

“Biotecnología | Goyaike.” Acceso 3 de Enero de 2016.                         http://www.goyaike.com.ar/?page_id=11.

“Carteles de Cromosomas | Desmotivaciones.” Accesso 5 de Enero de 2016.                                                                                       http://www. desmotivaciones.es/carteles/cromosomas/recientes.

“Esperma Sexado de Equinos Disponible Comercialmente En El 2010 | Argos Portal Veterinaria.” Acceso 3 de Enero de 2016. http://www.argos.portalveterinaria.com/noticia/4915/actualidad/esperma-sexado-de-equinos-disponible-comercialmente-en-el-2010-.html.

“Inseminación Con Semen Sexado, E Incremento de La Fertilidad Al Usarlo En Vacas Individuales O En Vacas Superovuladas.”. Acceso 3 de Enero de 2016.                     https://www.engormix.com/MA-ganaderia-carne/genetica/articulos/inseminacion-con-semen-sexado-t4714/103-p0.htm.



Para más información ver: SEMEN SEXADO EN LA ESPECIE EQUINA: LIMITACIONES AL USO COMERCIAL


Pilar Nieto Olmedo
Laura García Sánchez

Máster en Biología y Tecnología de la Reproducción de la Universidad de Oviedo
Curso 2015-2016