LA SELECCIÓN DE ESPERMATOZOIDES Y LAS NUEVAS TECNOLOGÍAS

Anabel Ruiz Castillo y Belén Zambrano Bravo

Figura 1: Ilustración de muestra de espermatozoides
Fuente: Reproducción Bilbao (2026)

La reproducción asistida es un conjunto de técnicas que mezclan biología y tecnología y que ayudan a personas o parejas a conseguir un embarazo cuando no ocurre de manera natural. Muchas personas no están familiarizadas con estos procesos, por lo que es importante explicarlos de forma clara y sencilla, partiendo de la base de que vamos a necesitar los dos gametos (óvulo en la mujer y espermatozoide en el hombre). Uno de los pasos más importantes dentro de la reproducción asistida es la selección de los mejores gametos, ya que no todos son iguales ni tienen la misma capacidad para fecundar un óvulo.

Los espermatozoides son las células reproductoras masculinas. Su función es llegar hasta el óvulo y fecundarlo. Sin embargo, durante una eyaculación se liberan millones de espermatozoides y solo unos pocos tienen las características adecuadas para lograr la fecundación. Algunos se mueven mal, otros tienen daños internos o no responden bien a las señales del cuerpo femenino. Por este motivo, en los laboratorios se utilizan técnicas que permiten seleccionar los mejores.

Tradicionalmente, los laboratorios han utilizado métodos como el “swim up” y la centrifugación en gradiente de densidad. El método swim up consiste en dejar que los espermatozoides que se mueven mejor naden hacia un medio limpio, separándose de los que no se mueven bien y que se desecharán después. Este método es sencillo, pero solo funciona correctamente cuando la muestra de semen es de buena calidad. Si la movilidad es baja, el método no resulta eficaz.

El otro método clásico es la centrifugación en gradiente de densidad. En este caso, el semen se coloca en capas de líquidos especiales y se centrifuga, es decir, se hace girar rápidamente. Los espermatozoides más “pesados” y con mejor forma quedan en el fondo y son seleccionados. Aunque este método es más rápido y se puede usar en más tipos de muestras, tiene un inconveniente importante: el proceso de centrifugado puede dañar a los espermatozoides, especialmente su ADN, que es el material genético que se transmite al futuro bebé.
Debido a estas limitaciones y a la posibilidad de que produzcan estrés mecánico y oxidative afectando al AND espermático, los científicos han buscado nuevas formas de seleccionar espermatozoides sin dañarlos. Aquí es donde entra en juego la microfluídica.

Figura 2: Imagen de dispersion de la cromatina de espermatozoides tras centrifugación en gradient de densidad (a) y la dispersion si utilizamos chips de microfluídica. Imagen de Quinn et al. 2018.

La microfluídica es una tecnología que utiliza canales microscópicos, tan pequeños que imitan los conductos naturales del cuerpo humano. En lugar de forzar a los espermatozoides mediante centrifugación, se les permite moverse de forma más natural. El semen se introduce en pequeños chips con canales muy finos, solo los espermatozoides que se mueven bien y están sanos pueden avanzar por estos canales. De esta forma, se seleccionan de manera más natural, similar a lo que ocurre dentro del aparato reproductor femenino.

Una de las principales ventajas de estos sistemas es que no necesitan centrifugación, lo que reduce el estrés y el daño celular. Además, se obtiene una muestra con ADN en mejor estado. Esto es muy importante, ya que un ADN sano aumenta las probabilidades de que el embrión se desarrolle de manera correcta.

Los sistemas microfluídicos pueden aprovechar diferentes comportamientos naturales de los espermatozoides como:

• Motilidad: capacidad para moverse. Los espermatozoides más sanos suelen moverse mejor, por ello los chips permiten que solo estos continúen avanzando.
• Reotaxis: capacidad de los espermatozoides para nadar en contra de una corriente de líquido. En el cuerpo de la mujer, los espermatozoides deben nadar contra el flujo natural para llegar al óvulo, algunos dispositivos microfluídicos imitan esta situación, permitiendo seleccionar aquellos espermatozoides que realmente son capaces de avanzar contra la corriente, lo que indica que son funcionales y fuertes.

Figura 3: Trayectorias de los espermatozoides sin estar en un medio fluido (a) y estando en uno (b). Imagen de Zhang et al. 2016.

• Quimiotaxis: capacidad de los espermatozoides para moverse guiados por sustancias químicas que el óvulo libera para atraer a los espermatozoides.

• Algunos chips microfluídicos utilizan sustancias como la progesterona para identificar y seleccionar estos espermatozoides, esta activa unos canales especiales en el espermatozoide que permiten la entrada de calico provocando un movimiento más intenso llamado hiperactivación (fundamental para que el espermatozoide pueda atravesar las capas que rodean al óvulo y fecundarlo). Los sistemas microfluídicos pueden identificar espermatozoides que ya están preparados para este proceso.

• Termotaxis: los espermatozoides se mueven hacia zonas con una temperatura ligeramente más alta. En el cuerpo femenino, el lugar donde ocurre la fecundación es un poco más caliente, los espermatozoides con mejor calidad responden mejor a este pequeño cambio de temperatura. Gracias a la microfluídica, se pueden crear gradientes de temperatura muy precisos y seleccionar los espermatozoides más adecuados.

En general, los espermatozoides seleccionados mediante estas técnicas presentan mejor integridad del ADN, mejor estado de la membrana celular y mayor capacidad para activar el óvulo tras la fecundación. Todo esto aumenta las probabilidades de éxito en los tratamiento de reproducción asistida. 

Otra gran ventaja de los sistemas microfluídicos es que son rápidos y fáciles de usar. Además, pueden funcionar con muestras pequeñas o de baja calidad, algo muy útil en casos de infertilidad masculina severa. Actualmente ya existen dispositivos comerciales basados en esta tecnología, como Zymot o Fertile, que se están empezando a utilizar en clínicas de fertilidad.

Como conclusión, la microfluídica representa un avance muy importante en la selección de espermatozoides. Permite imitar de manera más fiel lo que ocurre en la naturaleza, respetando el comportamiento y la fisiología de estas células. No se trata solo de mejorar la técnica de laboratorio, sino de dejar que los espermatozoides se comporten como lo harían dentro del cuerpo humano.

En el futuro, estas tecnologías podrán integrarse con otros pasos de la reproducción asistida, creando sistemas automatizados en un solo dispositivo, esto podría hacer los tratamientos más seguros, eficaces y más accesibles para muchas personas.

Figura 4: Cómic microfluídica 
Fuente: Pixton (2026)

Google Labs. (s. f.). NotebookLM [Herramienta de investigación y toma de notas impulsada por IA].

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DAÑO OXIDATIVO EN EL ESPERMATOZOIDE Y ANTIOXIDANTES EXÓGENOS

Estrella Fernández Jiménez y Azucena Muñoz Rodríguez

Graphical abstract. Causas del estrés oxidativo en el semen y consecuencias sobre los espermatozoides humanos y la fertilidad masculina.

1. ROS Y ESTRÉS OXIDATIVO

La infertilidad afecta al 17.5% de las parejas en edad reproductiva (OMS, 2023) y el factor masculino es la única causa en el 25% de los casos por una disminución de la calidad seminal de origen multifactorial (ambiental, genética, fisiológica, nutricional, etc.) (Auger et al., 2001), principalmente por el estrés oxidativo (30-80% de hombres infértiles) originado por elevadas concentraciones de especies reactivas de oxígeno (ROS) (Ko et al., 2014; Makker et al., 2009).

El oxígeno es un elemento necesario para la supervivencia celular, pero como resultado de los procesos fisiológicos y del metabolismo celular puede dar lugar a la formación de radicales libres de oxígeno (ROS). Su forma primaria es el anión superóxido (O2-), que surge de la adición de un electrón al O2 y puede convertirse en otras ROS como el peróxido de hidrógeno (H2O2), el radical hidroxilo (OH-), y el peroxilo (HO2). La presencia de electrones desapareados permite su interacción con aminoácidos, lípidos y ácidos nucleicos, provocando reacciones en cadena comprometen la vitalidad de la célula (Agarwal et al., 2014).

Se requieren niveles fisiológicos de ROS para el mantenimiento celular debido a su implicación en diversos procesos fisiológicos como son la maduración, hiperactivación y capacitación espermática, así como para la quimiotaxis, la unión a la zona pelúcida, la reacción acrosómica y la fusión entre ovocito y espermatozoide. A nivel testicular, las ROS son intermediarias implicadas en el tono vascular y la regulación génica (De Lamirande et al., 2009; Agarwal et al., 2014). En el semen, los principales productores de ROS son los espermatozoides inmaduros y los leucocitos, especialmente los neutrófilos. Ambas células aumentan su actividad mitocondrial y, adicionalmente, la vía de las NADHP, resultando en la producción de ROS (Nicolich et al., 2013).

En condiciones normales, existe un equilibrio entre la producción de ROS y la maquinaria antioxidante seminal y espermática (Ford et al., 2004). Sin embargo, este sistema puede desequilibrarse a favor de las ROS, ya sea por un aumento en su producción, por una deficiencia en la capacidad antioxidante o por ambas causas, generando un estado de estrés oxidativo presente en más del 80% de los hombres infértiles (Agarwal et al., 2011). Este estrés oxidativo puede generar daño espermático (Sikka et al., 2004) por inducción de peroxidación lipídica, incremento en la fragmentación de ADN (Moustafa et al., 2004), disminución en la movilidad y morfología espermática, y aumento de los fenómenos de apoptosis.

Actualmente, existen métodos comerciales capaces de medir el estrés oxidativo como el Kit Oxisperm, el cual se basa en el uso de un gel que reacciona con el anión superóxido (principal ROS responsable del estrés oxidativo en el semen humano), dando lugar a un precipitado que vira de color rosa a negro a concentraciones crecientes del anión superóxido. Por otra parte, este test sólo debe realizarse en muestras frescas ya que el proceso de criopreservación espermática puede inducir un incremento en los niveles de ROS y modificar el resultado del análisis. (Nicolich et al., 2013).

El aumento de estrés oxidativo espermático puede deberse a causas intrínsecas o extrínsecas (Cocuzza et al., 2007). Entre las causas intrínsecas se encuentran fallos en la espermatogénesis como la remodelación de la membrana del espermatozoide, las anomalías en la unión cabeza-cola, el desarrollo incompleto del acrosoma o las alteraciones en el citoesqueleto del espermatozoide (Sharma et al., 1996; Kothari et al., 2010). A nivel testicular existen diversas etiologías que aumentan la concentración de ROS por influjo de leucocitos como infecciones e inflamaciones genitourinarias o por aumento de la temperatura testicular y escrotal como en el varicocele (presente en el 30% de los hombres infértiles), la criptorquidia, la torsión testicular y su reparación. Por otra parte, la edad del hombre es un factor importante a tener en cuenta por su implicación en la producción y acumulación de ROS y por la asociada disminución de la esteroidogénesis y de la capacidad tamponadora de las células de Leydig (Cao et al., 2004).

De forma extrínseca al organismo, existen factores medioambientales que pueden provocar un aumento en los niveles de ROS y estrés oxidativo y alterar la espermatogénesis (Agarwal et al., 2003). Entre estos factores se encuentran la quimioterapia, la radiación ionizante y la exposición a toxinas y contaminantes como el metoxietanol presente en pinturas, líquidos de freno y otros químicos industriales (Syed et al., 1998), el tolueno presente en disolventes (Homma-Takeda et al., 2002), metales pesados como el cadmio (Koizumi et al., 1992) o el plomo (Hsu et al., 1997), las toxinas generadas al fumar cigarrillos (Mattison et al., 1982). Asimismo, estudios recientes (He et al., 2023) han demostrado que la toxina T-2 o micotoxina, producida por hongos y omnipresente en los cultivos agrícolas, alteraba significativamente la morfología de los testículos y de los espermatozoides en ratón y disminuía el nivel de testosterona y la concentración espermática. La ferroptosis inducida por la toxina T-2 podría ser mitigada eficazmente mediante la administración del inhibidor de la ferroptosis liproxstatina-1 o el antioxidante resveratrol, que proporciona un posible efecto terapéutico para el deterioro testicular.

Como se dijo anteriormente, el estrés oxidativo afecta a la espermatogénesis y a la funcionalidad espermática. En consecuencia, se alteran todos los parámetros del análisis seminal, incluyendo la concentración espermática (Agarwal et al., 2014), la movilidad y morfología (Aziz et al., 2004), la apoptosis celular (Agarwal et al., 2005) y la fragmentación del ADN espermático, lo que resulta en una disminución de la capacidad fecundante y peor desarrollo embrionario, con mayores tasas de aborto espontáneo y de recién nacidos enfermos por anomalías genéticas. Este efecto negativo se debe en gran parte a la alta susceptibilidad de las membranas espermáticas a la peroxidación por ROS por su elevada concentración de lípidos poliinsaturados El aumento de la peroxidación de fosfolípidos de membrana (Griveau et al. 1995) se traduce en la pérdida de integridad y fluidez de la misma, aumentando su permeabilidad y afectando a la movilidad espermática. Por otra parte, el estrés oxidativo aumenta la apoptosis en espermatozoides maduros, resultando en oligozoospermia (Gandini et al., 2000).

Todos estos efectos negativos sobre el espermatozoide pueden afectar a los resultados de las técnicas de reproducción asistida (TRA) (Agarwal et al., 2012)

2. ANTIOXIDANTES

Un antioxidante es una molécula capaz de retardar o prevenir la oxidación de otras moléculas evitando la generación de ROS y el daño celular. En un eyaculado se encuentran antioxidantes en el plasma seminal y, en menor medida, en los espermatozoides debido a su escaso contenido citoplasmático. Los antioxidantes provienen de dos vías, fisiológica y exógena.

Los antioxidantes endógenos que se encuentran en el semen se clasifican en enzimáticos (catalasa, glutatión peroxidasa y superóxido dismutasa) y no enzimáticos (carnitina, carotenoides, glutatión, urato y vitaminas C y E).

Los antioxidantes enzimáticos actúan a nivel de metabolismo directo de ROS, de la síntesis y reducción del glutatión, ciclos redox de tiol y activación de la expresión de algunas de estas enzimas (Drummond et al., 2000; Yu et al., 2015). La mayoría están reguladas por el factor de transcripción nuclear NRF2 mediante el elemento de respuesta antioxidante (ARE) localizado en los promotores de los principales genes del sistema antioxidante en semen. En condiciones normales, NRF2 se une a la proteína KEAP1 identificativa para la degradación. El estrés oxidativo disocia esta unión, permitiendo la translocación de NRF2 al núcleo y su unión a los ARE, que activa la expresión de genes que codifican para enzimas antioxidantes. Entre las enzimas del sistema antioxidante endógeno del semen que están bajo regulación de NRF2 se encuentra el conjunto de formas de la superóxido dismutasa (SOD), que cataliza la dismutación del radical superóxido a peróxido de hidrógeno fundamentalmente en el epidídimo, protegiendo de daños provocados por un exceso de O2 y aumentando los niveles de H2O2 en la eyaculación que estimula la cascada de reacciones de hiperactivación y capacitación del espermatozoide (Lifeng et al., 2014). La catalasa (CAT) cataliza la descomposición del peróxido de hidrógeno en oxígeno y agua en la mayoría de tejidos del tracto genital masculino, resultando esencial ante concentraciones elevadas de H2O2. La óxido nítrico sintasa (NOS) transforma la L-arginina en óxido nítrico (NO), que está relacionado con la función eréctil, la movilidad espermática y la reacción acrosómica, y actúa como antioxidante al evitar la peroxidación de lípidos de membrana (Drummond et al., 2000). La glutatión S-transferasa (GST) inactiva los agentes quimioterapéuticos productores de ROS. Otras enzimas que neutralizan las ROS son las peroxiredoxinas (PRX) y las tiorredoxinas (TRX), moduladas por la glutatión peroxidasa (GPX). Entre el conjunto de moléculas antioxidantes no-enzimáticas del semen se encuentran la vitamina E, la vitamina C, la coenzima Q10, la L-carnitina y la melatonina.

Por otra parte, los antioxidantes exógenos se obtienen a través de la ingesta de alimentos (frutas, verduras, frutos secos) o de suplementos nutricionales (suplementos vitamínicos, minerales o plantas medicinales), pudiendo mejorar la calidad seminal (Bermejo et al., 2014).

Entre las principales moléculas estudiadas se encuentran los ácidos grasos Omega 3 como el ácido linolénico (AL), el ácido eicosapentanoico (EPA) y el ácido docosahexanoico (DHA), constituyentes de membranas celulares e indispensables en la capacidad fecundante de los espermatozoides. Safarinejad et al. (2011) evaluaron el efecto de la suplementación con ácidos grasos omega 3 (EPA+DHA) sobre la calidad seminal de pacientes oligoastenoteratozoospérmicos (OAT) y sobre la capacidad antioxidante del plasma seminal, mostrando una mejora significativa en la concentración, movilidad y morfología espermática, así como una mejora en la capacidad antioxidante evaluada mediante la cuantificación de niveles de SOD y CAT. Adicionalmente, Comhaire et al. (2000) evaluaron el efecto de la administración conjunta de antioxidantes (N-acetilcisteína o vitaminas A y E) con ácidos grasos esenciales (DHA + ácido gamma linolénico + ácido araquidónico) durante un periodo de 6 meses, que mejoraba la concentración espermática en pacientes oligozoospérmicos, pero no mejoraba su movilidad ni su morfología espermática.

Por otro lado, se estudia el efecto antioxidante de múltiples vitaminas. La Vitamina C o ácido ascórbico es el principal antioxidante presente en el plasma seminal con valores 10 veces superiores a los del plasma sanguíneo (Lewis et al., 1997). Dawson et al. (1997) administraron vitamina C a pacientes fumadores y observaron una mejora de su concentración, morfología y vitalidad espermáticas. Esta mejora de movilidad y morfología espermática coincide con la observada por Cyrus et al. (2015) al administrar Vitamina C durante tres meses a pacientes tras varicocelectomía. La vitamina E in vitro reduce la peroxidación lipídica, protege a los espermatozoides de una disminución en su movilidad (Askari et al.) y disminuye la producción de H2O2 y la fragmentación de ADN. Su administración prolongada mejoraba la movilidad espermática y disminuía los niveles de malonaldehído (marcador de peroxidación) en pacientes astenozoospérmicos (Suleiman et al., 1996). De acuerdo a Suleiman et al. (1996), la administración combinada de estas dos vitaminas durante dos meses en pacientes infértiles mejoraba la concentración espermática y disminuía la fragmentación del ADN. La administración de zinc, ya presente en el plasma seminal, mejora la concentración, la movilidad progresiva y la capacidad fecundante de los espermatozoides en pacientes astenozoospérmicos (Omu et al., 1998). Las vitaminas A, C y D potencian este efecto (Omu et al., 2008) y la acción antioxidante del selenio (Scott et al., 1998).

En la maduración espermática, un antioxidante implicado es la L-carnitina, cuya concentración se correlaciona con la concentración espermática, el porcentaje de espermatozoides con movilidad progresiva y el porcentaje de espermatozoides con morfología normal (Agarwall et al., 2004). Además, en combinación con L-arginina y ginseng durante tres meses, Morgante et al. (2010) observaron una mejora mayor de la movilidad espermática. Por otro lado, la coenzima Q10 posee propiedades antioxidantes por su implicación en la cadena transportadora de electrones, y su administración a diferentes concentraciones y durante diferentes periodos de administración parece incrementar la movilidad y concentración espermática (Balercia et al., 2009; Safarinejad et al., 2009). Finalmente, se han asociado niveles bajos de ácido fólico en el plasma seminal con mayores índices de fragmentación de ADN espermático por su implicación en la síntesis de ADN y ARN (Boxmeer et al., 2009). Su administración aislada no ha sido estudiada, pero en combinación con zinc durante 26 semanas aumentaba la concentración espermática (Ebisch et al., 2006), y en pacientes astenozoospérmicos tras una varicocelectomía mejoraba la calidad seminal (Azizollahi et al., 2013).

Además, se sigue analizando el efecto antioxidante de la administración de diferentes combinaciones de estas moléculas y su influencia sobre la calidad seminal. Algunos de estos ensayos quedan reflejados en la Tabla 1. 

Tabla 1. Resumen de resultados de distintos ensayos clínicos con antioxidantes (Martínez et al., 2017).

3. CONCLUSIÓN   

En conclusión, teniendo en cuenta las consecuencias del estrés oxidativo en la función espermática y en las TRA, éste debería ser analizado de manera más rutinaria en las muestras seminales para clasificar correctamente la causa de infertilidad de los pacientes. De este modo, podría mejorarse la calidad espermática con suplementos nutricionales para, finalmente, aumentar las posibilidades de éxito de las TRA.

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¿PODRÍA MEJORAR MI CALIDAD SEMINAL CON UNA DIETA ANTIOXIDANTE?

Estrella Fernández Jiménez y Azucena Muñoz Rodríguez 

Cada día se escuchan más noticias sobre la reproducción y los problemas de fertilidad que afectan al 17.5% de la población global, siendo el hombre el responsable en uno de cada cuatro casos pero, ¿es posible mejorar nuestra calidad seminal cambiando nuestros hábitos y nuestro estilo de vida?

A menudo, cuando los hombres acuden a una clínica de reproducción asistida, la primera prueba a la que se les somete es un seminograma, que consiste en una valoración tanto macroscópica del semen como microscópica de los espermatozoides. En ella se analizarán parámetros como el volumen, el color, la viscosidad y el pH del semen así como la concentración, movilidad y morfología de los espermatozoides. La finalidad de esta prueba es conseguir una orientación sobre el motivo de la infertilidad y la causa por la que la pareja ha acudido a la clínica. Sin embargo, el seminograma no es suficiente  para determinar la causa de la infertilidad y es frecuente que se soliciten pruebas complementarias como la determinación de estrés oxidativo. 

El estrés oxidativo se produce de forma natural por un exceso de especies reactivas de oxígeno o ROS, que son moléculas que se producen en nuestro organismo como resultado de las reacciones biológicas y que en exceso daña a nuestras células. El estrés oxidativo puede disminuir el número de espermatozoides, alterar su forma, hacerlos más lentos e incluso inmóviles, e inducir su muerte. Otra consecuencia del estrés oxidativo, es la fragmentación del ADN de los espermatozoides, que afecta a la organización y transmisión del material genético, aumentando el riesgo de aborto espontáneo y de enfermedades genéticas. Para contrarrestar estos efectos negativos, tanto el espermatozoide como el semen cuentan con mecanismos y moléculas antioxidantes como enzimas, vitaminas o minerales. 

El estrés oxidativo puede provenir del propio individuo por diversas enfermedades que aumentan la temperatura testicular, como el varicocele, que consiste en la acumulación de sangre en los testículos impidiendo la circulación sanguínea normal; la criptorquidia, que es la falta de descenso testicular durante el nacimiento o la torsión testicular y su reparación. Otras causas pueden ser infecciones e inflamaciones genitales o una mayor edad del hombre, que lo hace más susceptible al estrés oxidativo por acumulación del daño y disminuye su capacidad de formar complejos antioxidantes. Además, existen fuentes externas que aumentan el estrés oxidativo, como son el consumo de alcohol, tabaco o drogas, la exposición a contaminantes ambientales, pesticidas y metales pesados, las radiaciones electromagnéticas, el estrés, las altas temperaturas y la quimioterapia. 

Causas de estrés oxidativo en el semen.

Recapitulando, nuestro organismo y, en concreto, el semen y los espermatozoides, cuentan con maquinaria antioxidante para prevenir estos daños, pero a veces no es suficiente. Ante esta situación surge la pregunta: “¿Puedo mejorar mi calidad seminal?”. Para dar respuesta a esta cuestión se estudia la posibilidad de tomar determinados alimentos o suplementos nutricionales (vitaminas, fármacos o plantas medicinales) que corrijan y prevengan el daño causado por estrés oxidativo.

Por ejemplo, los frutos rojos son frutas con alta capacidad antioxidante. Los ácidos grasos Omega 3, presentes en pescados y mariscos, nueces y semillas, pueden mejorar la concentración y morfología de los espermatozoides. La vitamina C que se encuentra en frutas cítricas como las naranjas, el kiwi, los pimientos y el brócoli podría mejorar la concentración, morfología y vitalidad de los espermatozoides en pacientes infértiles fumadores. La L-carnitina propia de la carne podría aumentar la concentración de espermatozoides y estimular su maduración. Las vitaminas B3, B9 y B12 presentes en nueces, guisantes, cereales integrales y naranjas, participan en la síntesis de hormonas (incluida la testosterona) y formación del ácido fólico, pudiendo favorecer a la movilidad de los espermatozoides. Recientemente se ha estudiado el efecto de la cúrcuma que, además de resultar un poderoso agente antiinflamatorio y antioxidante, podría aumentar de forma natural la concentración de las enzimas antioxidantes propias del individuo y ayudar a reparar la fragmentación de ADN. Finalmente, otros suplementos como el selenio, el zinc, el ácido fólico, la coenzima Q10 o la vitamina E (presentes en aceites vegetales, nueces, semillas y hortalizas de hoja verde) podrían aumentar la potencia sexual y mejorar la vitalidad de los espermatozoides. Es importante resaltar que todos estos elementos pueden ingerirse mediante suplementos, por lo que ninguna dieta es excusa para no intentar mejorar la calidad seminal por esta vía.

Suplementos que mejoran la calidad espermática disminuyendo el estrés oxidativo.

Por todo esto, es muy recomendable que los hombres sigan una dieta variada y equilibrada con abundantes verduras, frutas, pescado, carne, cereales integrales, legumbres y frutos secos o, en su lugar tomen los suplementos adecuados si desean mejorar su calidad seminal. Esta dieta debe ir acompañada de una buena actividad física para evitar o contrarrestar la obesidad, otro factor que afecta tanto a la calidad del semen como a los niveles de testosterona, y evitar el consumo y exposición de sustancias tóxicas (alcohol, tabaco, cafeína, drogas, etc) y las acciones que aumenten la temperatura escrotal (saunas, el calor del portátil apoyado en las piernas o la ropa interior muy ajustada) también pueden contribuir a mejorar la calidad seminal. Finalmente, es importante que estos buenos hábitos se mantengan de forma constante durante al menos 3 meses para que haya un cambio real en la calidad seminal, que es el tiempo que tardan los espermatozoides en formarse y madurar.

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