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14 de diciembre de 2019

Selección espermática: nuevo método mediante progesterona y distancia


Introducción

El 30℅ de las parejas que recurren a las técnicas de reproducción asistida para conseguir un embarazo presenta infertilidad masculina (Marzano et al., 2019). En la rutina de laboratorio el estudio de la fertilidad masculina se realiza mediante la evaluación de los parámetros establecidos por la Organización Mundial de la Salud (OMS) como son volumen de eyaculado, concentración espermática, morfología y motilidad (OMS, 2010) y según los valores obtenidos se recurre a la aplicación de fecundación in vitro convencional (FIV) o inyección espermática intracitoplasmática (ICSI). En este artículo vamos a realizar una revisión de las técnicas de selección espermática disponibles para seleccionar los espermatozoides con mejor calidad, desde las técnicas más convencionales como gradientes y swim-up hasta las más novedosas como microfluídica o el uso de progesterona.

Centrifugación por gradiente de densidad

Los gradientes de densidad consisten en la centrifugación del semen dispuesto en la superficie de soluciones con diferentes densidades, como por ejemplo 45% y 90% a 400g durante 20 minutos. De esta manera se seleccionarán los espermatozoides por su densidad y se recogerán del pellet resultante tras la centrifugación. Tanto esta técnica como Swim-up (explicada a continuación) son de uso rutinario en los laboratorios de reproducción pero presentan inconvenientes como el aumento de fragmentación en el ADN de los espermatozoides. En el estudio realizado por Muratori et al., 2019 se evaluó el porcentaje de daño en el ADN de los espermatozoides sometidos a Gradiente de densidad y swim-up, obteniendo como resultado un aumento del 60% y del 40% del daño de ADN en los espermatozoides.



Swim-up

Es una técnica que consistente en depositar la muestra de semen en el fondo del tubo y añadir en la parte superior medio de cultivo. Después se centrifuga a 250g durante 10 minutos y se elimina el sobrenadante. A continuación, se añade nuevo medio de cultivo y se incuba entre 20 minutos y 1 hora para que los espermatozoides depositados en el fondo puedan ascender. De esta manera, se recogen de la capa superficial los espermatozoides con mejor motilidad y morfología (Berguera et al., 2014; Marzano et al., 2019). Como se comentó anteriormente,  el swim-up es una técnica muy usada pero que aumenta la fragmentación del ADN en espermatozoides.




PICSI

Es una técnica basada en el uso de ácido hialurónico (HA) como método de selección espermática. El ácido hialurónico es un glicosaminoglicano que se encuentra presente tanto en el moco cervical como en las células del cúmulo. Además, cabe destacar que los espermatozoides presentan receptores para ácido hialurónico por lo que aquellos que se unen a HA se encontrarán en estado de madurez, lo que permitirá que sean usados en las técnicas de TRA.  Se han realizado varios estudios sobre la efectividad de esta técnica, entre ellos el de Kim et al., 2019, donde se estudian 152 parejas con infertilidad masculina. En este estudio la infertilidad se debía a teratozoospermia con menos de 1% de espermatozoides con formas normales. De las 152 parejas, 77 fueron sometidas a PICSI, es decir, selección de espermatozoides mediante HA y realización de ICSI. Los resultados de este estudio muestran un aumento de las tasas de fecundación y de embriones de buena calidad en comparación a la selección a microscopio de solo por morfología y motilidad y realización posterior de ICSI.



Microfluídica


El método de microfluídica está basado en el recorrido que deben realizar los espermatozoides por el tracto genital femenino. De esta forma, se ha desarrollado un chip compuesto de microcanales para seleccionar aquellos espermatozoides que presentan mayor motilidad y menor porcentaje de anomalías, como fragmentación del ADN. (Berguera et al., 2014). Los métodos de selección espermática mediante microfluídica se pueden dividir según usen mecanismos activos o pasivos de selección. Los métodos activos están basados en el uso de gradientes químicos, electroforesis o flujos, mientras que los métodos pasivos seleccionan los espermatozoides en base a su motilidad únicamente. Cabe destacar que esta técnica es no invasiva y muestra mejores resultados en la vitalidad, motilidad y morfología en comparación a las técnicas de centrifugación y swim-up. (Nosrati et al., 2017).



Columnas de Anexina V (MACS)

MACS es una técnica que consistente en la incubación de los espermatozoides con microperlas funcionalizadas con Anexina V. Durante esta incubación aquellos espermatozoides que hayan externalizado fosfatidilserina en la hemicapa externa de la membrana debido al inicio del proceso de apoptosis quedarán unidos a estas microperlas. Tras la incubación la muestra pasará por una columna con propiedades magnéticas donde los espermatozoides unidos a las microperlas quedarán retenidos. De esta manera solo los espermatozoides no unidos a la columna se usarán para fertilizar (Berguera et al., 2014).



Progesterona-distancia

Lin et al.,2019 han desarrollado un dispositivo basado en la distancia que deben recorrer los espermatozoides desde la vagina hasta las trompas de Falopio y en la quimiotaxis que sufren estos mediante la progesterona secretada por las células del cúmulo durante el proceso de selección natural. La quimiotaxis consiste en que los espermatozoides se mueven en la dirección de un gradiente formado por una sustancia química o péptido, y solo los espermatozoides capacitados responden a esta. Por lo tanto, los espermatozoides seleccionados por quimiotaxis están capacitados y son de mejor calidad.

El dispositivo desarrollado está formado por un cámara que simula la vagina (A) y dos cámaras que simulan los ovarios (F y G). Los canales que comunican F y G simulan las trompas de Falopio, quedando en el centro una cavidad que hace las veces de útero. En el estudio realizado por Lin et al., 2019 se dispusieron las mezclas de agar y quimioatrayentes (para simular el gradiente de progesterona) de la siguiente forma: se establecieron tres surcos con agar entre el útero (C) y uno de los ovarios (F) (D1, D2 y D3) y otros tres surcos entre C (útero) y G (ovario) (E1, E2 y E3). Se depositó una solución control formada por 2% de agar y DMSO en el surco D1 y una solución de 2% agar con 0.3 M de progesterona en E1. Tras depositar semen seleccionado mediante gradiente de densidad en la cámara A se les proporcionó 150 minutos para nadar y llegar a las cámaras más alejadas. Tras este tiempo se hicieron las evaluaciones de morfología, dispersión de cromatina y apoptosis. Tras la realización del experimento solo se encontraron diferencias significativas entre la morfología de los espermatozoides del punto E1 y D2, teniendo los del surco E1 mejor morfología.



Discusión

Cómo se ha descrito a lo largo de este artículo, existen numerosas técnicas para la selección espermática. Las más usadas son la centrifugación por gradiente de densidad y swim-up. Estas técnicas son poco costas y rápidas de llevar a cabo, pero presentan el inconveniente de que producen daños en el ADN espermático, tal y como recogen los trabajos realizados por De Martin et al., 2017 y Muratori et al., 2019. Debido a este inconveniente, se han desarrollado nuevas técnicas para poder seleccionar los espermatozoides más viables, motiles y con mejor morfología. Son muchas las técnicas desarrolladas como el uso de columnas de Anexina V, microfluídica y PICSI, de las cuales se han realizado diferentes estudios con resultados prometedores. En cuanto a la PICSI Nasr-Esfahani el al., 2008 informaron que los espermatozoides seleccionados por esta técnica mostraron menos deficiencia de protamina, fragmentación de ADN y morfología anormal en comparación con las técnicas convencionales de selección espermática. Por otro lado, en el estudio realizado por Troya & Zorrilla, 2015 se demostró que, en parejas infértiles, la selección mediante el uso de columnas de Anexina V limita la cantidad de esperma seleccionado que presenta ADN dañado, lo que condujo a mejores tasas de embarazo clínico en comparación con ICSI convencional y PICSI. Una de las técnicas más novedosas de selección espermática es la microfluídica. Esta técnica se presenta como una potente alternativa a swim-up y a la centrifugación por gradiente densidad, tal como se explica en los trabajos de Shirota et al., 2016 y Nosrati et al, 2017. Finalmente, cabe destacar la creación de una nueva técnica de selección espermática basada en el uso de un gradiente quimiotáctico de progesterona y en imitación de la distancia que deben recorrer los espermatozoides por el tracto genital femenino. Con esta técnica, desarrollada por Lin et al, 2018 se consigue seleccionar espermatozoides de mejor morfología y con menos fragmentación del ADN, por lo que se presenta como una muy buena técnica para la selección espermática, pero aún deben realizarse más estudios con mayor número de pacientes y diversas causas de infertilidad para comprobar su verdadera eficiencia.

Podemos concluir que, pese al gran número de técnicas desarrolladas para la selección espermática, aún no se ha desarrollado aquella que destaque en sus resultados por encima de las demás, todas poseen sus ventajas e inconvenientes, siendo algunas de ellas demasiado recientes como para poder obtener alguna conclusión en firme sobre su efectividad en clínica.

Bibliografia

Berguera, A., de la Orden Rodríguez, M., Martínez, J. V., Fernández, P. J. & Rubio, J. M. (2014). Evaluación de dos métodos de capacitación espermática (swim-up y gradientes) mediante el estudio de la morfología, madurez y fragmentación del DNA de los espermatozoides en muestras destinadas a IA. Revista Asebir. Recuperado de: https://revista.asebir.com/evaluacion-de-dos-metodos-de-capacitacion-espermatica-swim- upy-gradientes-mediante-el-estudio-de-la-morfologia-madurez-y-fragmentacion-del-dna-de-losespermatozoides-en-muestras-destinadas-a-ia/


Kim, S.J., Kim, H., Kim, T.H., Jeong, J., Lee, W.S. & Lyu, S.W. (2019). Effect of sperm selection using hyaluronan on fertilization and quality of cleavage-stage embryos in intracytoplasmic sperm injection (ICSI) cycles of couples with severe teratozoospermia. Gynecological Endocrinology. https://doi.org/10.1080/09513590.2019.1681960

Lin K., L R., Ni Y., Sun P., Liu Y., Zhang D & Huang H. (2018). Novel distance‑progesterone‑combined selection approach improves human sperm quality. Journal of Translational Medicine 16:203. https://doi.org/10.1186/s12967-018-1575-7

Marzano, G., Chiriacò M.S., Primiceri, E., Dell’Alquila, M.E., Ramalho-Santos,J., Zara, V., Ferramosca,A & Mauriccio, G. (2019). Sperm selection in assisted reproduction: A review of established methods and cutting-edge possibilities. Biotechnology Advances. https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.2019.107498

Muratori M, Tarozzi N, Carpentiero F, Danti S, Perrone FM, Cambi M, Casini A, Azzari C, Boni L, Maggi M, Borini A & Baldi E. (2019). Sperm selection with density gradient centrifugation and swim up: efect on DNA fragmentation in viable spermatozoa. Scientific Reports 9, 7492. https://doi.org/10.1038/s41598-019-43981-2

Nasr-Esfahani, M.H., Razavi, S., Vahdati, A.A., Fathi & F. Tavalaee, M. (2008). Evaluation of sperm selection procedure based on hyaluronic acid binding ability on ICSI outcome. J Assist Reprod Genet, 25(5), 197-203. https://doi.org/10.1007/s10815-008-9223-4

Nosrati, R., Graham, P.J., Zhang, B., Riordon, J., Lagunov, A., Hannam, T.G., Escobedo, C., Jarvi, K & Sinton, D. (2017). Microfluidics for sperm analysis and selection. Nature Reviews Urology, 14(12), 707-730. https://doi.org/10.1038/nrurol.2017.175

Troya, J. & Zorrilla, I. (2015). Annexin V-MACS in infertile couples as method for separation of sperm without DNA fragmentation. JBRA Assist Reprod, 19(2), 9-66. https://doi.org/10.5935/1518-0557.20150015

Shirota, K., Yotsumoto, F., Itoh, H., Obama, H., Hidaka, N., Nakajima, K. & Miyamoto, S. (2016). Separation efficiency of a microfluidic sperm sorter to minimize sperm DNA damage. Fertiliy and Sterility, 102(2), 315-321. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2015.10.023.



30 de enero de 2012

Efecto del WIFI en la motilidad y la fragmentación del DNA espermático



El tema que nos ocupa es el efecto de las microondas WIFI, como causa de infertilidad masculina, ya que induce a la formación de especies reactivas de oxígeno (ROS). Estos radicales libres producen peroxidación de lípidos, daño a nivel de la membrana, inmovilidad, daño en el DNA y por último la muerte celular.
La integridad del DNA es esencial para la concepción ya que la fragmentación de DNA ha sido relacionada con una afectación de la fertilidad, desarrollo embrionario pobre, altas tasas de aborto e incremento en la morbilidad de la descendencia. Por esta causa se realizó el estudio.
Para evaluar los efectos que produce el WIFI de los ordenadores portátiles sobre los espermatozoides humanos, se realizó un estudio en la que se cuantificó la fragmentación del DNA, la motilidad y viabilidad espermática.

Tomando muestras de 29 pacientes, los cuales mostraban buena salud y un análisis espermático normozoospérmico con buena motilidad y una concentración menor de 0,5 10^6/ml  de peroxidada en leucocitos.
A partir de estas muestras, se realizó una selección de espermatozoides móviles mediante swim up. El pellet de las muestras fue incubado a 37ºC durante una hora, tras esto se realizó una valoración  tanto de la concentración espermática como de la motilidad, determinando las muestras entre 10-20 millones/ ml.


Una vez realizada la valoración de la concentración espermática, se hicieron dos alícuotas de 400µl de cada muestra cubiertas por aceite para embriones ubicadas en placas de petri, evitando así la evaporación. Siendo la muestra A el control y la muestra B la que se someterá a las condiciones experimentas.

Estas consistían en la exposición de los espermatozoides bajo un ordenador portátil (Toshiba Satellite) con WIFI (frecuencia 2,4GHz) el cual estaba en activo subiendo y descargando información durante 4 horas de exposición, y a una distancia de 3 cm que emula a la situación real que existe entre el epidídimo y el ordenador al trabajar con él en el regazo. En todas las muestras se controló la temperatura constante a 25ºC mediante mediciones cada 5minutos realizadas con un termómetro.

Tanto en el grupo A (control) como el grupo B se realizaron las siguientes mediciones:

-         Viabilidad, la cual se valoró mediante una tinción con eosina según dictan los parámetros de  la OMS.

-         Motilidad, la evaluó el mismo operador en todas las muestras, para ello se sirvió de una cámara Makler con la que determinó en qué categoría incluía cada muestra e: motilidad progresiva, motilidad no progresiva e inmóvil.

-         Fragmentación de DNA, llevada a cabo mediante el método TUNEL, usando fluoresceína dUTP, midiendo 500 células por muestra y usando control negativo en el cual ninguna célula mostró fluorescencia y control positivo que previamente había sido tratado con DNAasa y en el que el 100% de las células emitieron fluorescencia.

El análisis estadístico llevado a cabo, fue para diferencias de medias entre dos grupos, mediante un Test U-Mann Whitney, considerándose una p menor de 0,05 significativa.

Como resultado de este estudio, no hubo diferencias en el porcentaje de esperma viable entre el grupo control y el experimental, por el contrario la exposición al WIFI indujo un descenso significativo en la motilidad progresiva del esperma y un incremento de los no móviles frente al control.
El porcentaje de los espermatozoides no progresivos no mostró diferencias.

Lo más destacado del estudio fue el aumento significativo encontrado en la fragmentación del DNA de las muestras expuestas al WIFI, en comparación con el grupo control, el cual no estaba expuesto.

En la actualidad la población tiene unos estilos de vida que afectan no lo solo a su salud sino a su capacidad reproductiva, ya que es la condición fisiológica que primero se ve afectada en el cuerpo humano, provocando infertilidad. Las estadísticas nos dicen que en el 50% de estos casos, se debe a un factor masculino. El uso del portátil ha aumentado significativamente en los últimos años especialmente en la población en edad reproductiva.
Por lo tanto en este estudio se intenta demostrar que los ordenadores portátiles conectados a Internet sin cables (WIFI) están conectados a través de  RFEMW, cuyas microondas dañan a los órganos reproductivos, reduciendo la calidad del esperma por un efecto no térmico, es importante destacar esto, ya que hay estudios relacionados con el efecto térmico producido por los ordenadores sobre las mismas medidas que este estudio, la diferencia es que en este estudio se controló la temperatura constantemente a 25ºC.
El descenso en la motilidad espermática tiene una explicación plausible, el esperma se ve afectado por campos magnéticos y electromagnéticos, los cuales inducen daño oxidativo de fosfolípidos y daños mitocondriales, provocando una disminución de la energía lo cual implica un descenso en la motilidad, aunque en este estudio no hubo diferencias significativas entre los dos grupos.
Respecto a la fragmentación del DNA, se comprobó anteriormente en diferentes estudios “ex vivo” que la radiación emitida por teléfonos móviles afectaba a la integridad de DNA por efectos no térmicos y por el presente estudio se demuestra “in vivo” que se produce esta fragmentación a causa de las radiaciones producidas por campos electromagnéticos en mecanismos biológicos.


Se cree que es debido, al igual que en el caso de la radiación emitida por móviles a la alteración de la expresión génica en la cascada ERK y proteínas reguladoras de daños oxidativo tales como superoxido dismutasa (SOD) y glutatión reductasa.
Por último decir que el espermatozoide es una célula muy especializada y por lo tanto es muy susceptible de cualquier daño a la integridad del DNA.
Por esta causa no se puede aseverar que todo el daño sea producido únicamente por las radiaciones RF-EMW generadas por los dispositivos wireless.

Video relacionado con el artículo


Bibliografía:
- Use of laptop computers connected to internet through Wi-Fi decreases human sperm motility and increases sperm DNA fragmentation.
Conrado Avendaño, M.S.Arieda Mata, M.S, César A. sanchez Sarmiento,M.D.,Ph.D.,
Gustavo F.Doncel, M D., Ph.D
Fertil and Sterillity,Vol 97. No 1, January 2012
- Video youtube. Wi-Fi kills sperm in men

Máster en Biología y Tecnología de la Reproducción.

Rocio Camporro Vázquez
David Llaneza Suárez
Lorena Solano Alonso 

27 de enero de 2012

¿AFECTA EL TABACO A LA INFERTILIDAD MASCULINA?

La infertilidad se define como la imposibilidad de una pareja de conseguir un embarazo deseado tras un año de vida sexual activa. Afecta al 15% de las parejas y su causa puede ser de origen masculino, femenino o de ambos, pero hay aproximadamente un 20% en el que su causa es desconocida.

Dentro del factor masculino, el principal origen de la infertilidad es la alteración en el semen, la cual afecta a la morfología, motilidad, reducción en el número de los espermatozoides y al ADN. Entre todas las causas que pueden originar estas alteraciones se está dando importancia a los hábitos tóxicos, en especial al tabaco, ya que esta muy extendido en la población.

Se sabe que el tabaco tiene alrededor de 4000 compuestos químicos (Figura 1) con efectos nocivos para la salud, provocando daños cardiacos, pulmonares y cancerígenos y además afecta directa o indirectamente a la función y viabilidad de los gametos.

Figura 1: Componentes del tabaco.

El componente más abundante es la nicotina y junto a otros daña la calidad del esperma haciendo que el ADN se fragmente (Figura 2), provocando rupturas o lesiones en el material genético lo cual hace que la fecundación sea complicada y en caso de que se produzca, se dificulta el desarrollo embrionario y fetal normal.

Figura 2: Fragmentación del ADN espermático.

Esta fragmentación se produce porque el tabaco provoca un aumento de las especies reactivas de oxigeno (ROS), moléculas muy pequeñas e inestables químicamente, por lo que son altamente reactivas  y alteran o dañan  estructuras celulares. En condiciones normales, el espermatozoide también está sometido a ROS pero existen mecanismos de defensa como los antioxidantes. El problema está en que el tabaco aumenta ROS y disminuye a la mitad la capacidad antioxidante en sangre, originando un estrés oxidativo que provoca la fragmentación del material genético del espermatozoide.

A pesar de los numerosos estudios realizados los mecanismos moleculares por los cuales el tabaco afecta a la integridad del espermatozoide no se conocen con exactitud. Pero parece ser que todos estos daños son proporcionalmente dependientes de la dosis y del tiempo de exposición a los componentes tóxicos del tabaco. Por lo tanto, se recomienda a aquellos hombres que acudan a Técnicas de Reproducción Asistida que abandonen el consumo de tabaco.




Bibliografia:

http://www.reproduccionasistida.org/esterilidad-e-infertilidad/

http://www.ivi.es/infertilidad

Viloria, T., Garrido, N., Fernandez, J.L., Remohí, J., Pellicer, A., Muriel, L. y Meseguer, M. (2006). Aumento de la fragmentación del ADN espermático en los fumadores tras capacitación por Swim-up. Asebir;11(2), 15-21.




Vanesa Abón Escalona, Estela Fernández Alegre y Lorena García Gaipo
Análisis funcional del espermatozoide
Máster en Biología y Tecnología de la Reproducción

EFECTO DEL TABACO SOBRE LA FRAGMENTACIÓN DEL ADN ESPERMÁTICO

Numerosos estudios indican que el consumo de tabaco puede provocar una disminución de la calidad seminal, afectando a factores morfológicos, cinéticos y citogenéticos. Todos estos daños ponen en riesgo la fertilidad masculina. Dentro de las alteraciones citogenéticas se incluyen aneuploidías cromosómicas, descondensación nuclear y fragmentación del ADN (Figura 1).


Se sabe que el tabaco contiene hasta 4000 compuestos muchos de ellos genotóxicos (Hammond et al, 2006). Estos compuestos se pueden encontrar en dos estados, uno gaseoso y otro en forma de partículas solidas, siendo el monóxido de carbono y la nicotina los más perjudiciales de cada estado respectivamente. La nicotina es un alcaloide y el componente más abundante en el tabaco, pudiéndose llegar a absorber hasta 1mg por cigarrillo y tiene una vida media de 2 horas. En cambio su metabolito, la cotinina, puede llegar a durar hasta 20 horas en el torrente sanguíneo. Ambos compuestos se han detectado en el plasma seminal de fumadores (Vine, 1996) lo que indica su paso a través de la barrera hemato-testicular.


Este  alcaloide es un potente agente oxidante que actúa sobre la integridad de la membrana espermática. Además, debilita los sistemas antioxidantes, que en condiciones normales deben estar en equilibrio con las Especies Reactivas del Oxígeno (ROS) para mantener los espermatozoides viables (O y cols, 2006).

Los metabolitos del tabaco pueden inducir una reacción inflamatoria en el tracto genital masculino, lo que conlleva la liberación de mediadores químicos como las interleukinas que reclutan a los leucocitos y estos generan elevados niveles de ROS en el semen dando lugar a estrés oxidativo (Figura 2).

Figura 2: Relación entre la producción de ROS y la infertilidad masculina.

Como resultado de este estrés la cromatina puede sufrir fragmentación de cadena simple o doble, oxidación de sus bases y/o delección de los cromosomas. Para evaluar el estrés sobre el ADN se estudia el marcador biológico 8-hidroxi-2´-deoxiguanosina (8-OHdG), resultado de la oxidación de la desoxiguanosina (dG), uno de los componentes del ADN (Figura 3). La formación de 8-OHdG es previa a la fragmentación de la doble hélice. Este daño, anterior a la ruptura, puede ser reparado en alguna medida por el ovocito pero cuando la ruptura es de doble cadena es irreversible e incompatible con la fertilización normal y el desarrollo de un embarazo viable (Mendeluk y López, 2009).

  Figura 3: Transformación de la dG en 8-OHdG por acción de los radicales libres.

Los espermatozoides son más vulnerables a ROS que otras células porque sus membranas tienen más ácidos grasos poli-insaturados. Una exposición prolongada a ROS produce peroxidación lipídica alterando la estructura de los receptores de proteínas, enzimas y proteínas de transporte; y provocando la fragmentación del ADN espermático (Fraczek y Kurpisz, 2005). 

Se ha visto que el efecto  del tabaco sobre el ADN aumenta tras la capacitación, lo cual lleva a pensar que altera selectivamente la capacitación del semen por Swim-up en los hombres fumadores. Por lo que se especula que el eyaculado podría ocultar el efecto perjudicial del tabaco. Además aquellas células que estén algo fragmentadas tras este proceso acabaran fragmentándose por completo si se incuban (Viloria T. et al, 2006).

A pesar de que el tabaco es un toxico y que abundante bibliografía lo relaciona con la fragmentación del ADN espermático, hay numerosos autores que no han encontrado esta relación (Sergerie et al, 2000). Puesto que está demostrado que la integridad del espermatozoide afecta a la fertilidad tanto in vivo como in vitro deberían realizarse más estudios al respecto.  De todas formas se recomienda a aquellos hombres que acudan a Técnicas de Reproducción Asistida que eviten el consumo de tabaco.




Bibliografía:

Fraczek, M. and Kurpisz, M. (2005) The redox system in human semen and peroxidative damage of spermatozoa. Postepy Hig. Med. Dosw.  (Online), 59, 523- 534.

Hammond D, Fong GT, Cummings KM, O’Connor RJ, Giovino GA, McNeill A. (2006). Cigarette yields and human exposure: a comparison of alternative testing regimens. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev; 15(8), 1495–501.

Mendeluk, G.R. y López, S. (2009). Cesacion tabáquica. Su importancia en la salud sexual y reproductiva masculina. Revista del Hospital J. M. Ramos Mejía (Online), 14(2).

O, W.S., Chen, H. and Chow, P.H. (2006). Male genital tract antioxidant enzymes their ability to preserve sperm DNA integrity. Mol. Cell. Endocrinol., 250, 80-83.

Sergerie, M., Ouhilal, S., Bissonnette, F., Brodeur, J. and Bleau, G. (2000). Lack of association between smoking and DNA fragmentation in the spermatozoa of normal men. Hum. Reprod., 15, 1314-1321.

Viloria, T., Garrido, N., Fernandez, J.L., Remohí, J., Pellicer, A., Muriel, L. y Meseguer, M. (2006). Aumento de la fragmentación del ADN espermático en los fumadores tras capacitación por Swim-up. Asebir;11(2), 15-21.

Vine, M.F. (1996). Smoking and male reproduction: a review. Int. J. Androl., 19, 323-337.



Vanesa Abón Escalona, Estela Fernández Alegre y Lorena García Gaipo
Análisis funcional del espermatozoide
Máster en Biología y Tecnología de la Reproducción